磷酸丙糖異構酶（Triose-phosphate isomerase，TPI）試劑盒說明書

微量法 100T/96S

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

植物葉綠體中磷酸丙糖異構酶是光合作用中參與 calvin 循環的重要酶。作用于磷酸甘油醛和磷酸二羥丙酮之間的轉化，磷酸二羥丙酮能快速透過葉綠體的包膜進入細胞質，并在其中逐步轉化為蔗糖。

測定原理：

磷酸丙糖異構酶將磷酸二羥丙酮轉化為 3-磷酸甘油醛，3-磷酸甘油醛與NAD 在 3-磷酸甘油醛脫氫酶的作用下生成 3-磷酸甘油酸和NADH，340nm 處的吸光度變化反映了磷酸丙糖異構酶的活性的高低。

磷酸丙糖異構酶試劑盒   光合系列-常備現貨

組成：

試劑二：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存。臨用前加 2ml 蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑三：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存。臨用前加 2 ml 蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑四：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存。臨用前加 2 ml 蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

自備儀器和用品：

天平、低溫離心機、研缽、震蕩儀、紫外分光光度計/酶標儀、微量石英比色皿/96 孔板。

酶液提取

①總TPI 酶提取：建議稱取約 0.1g 樣本，加入 1ml 提取液一，冰浴勻漿后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇 7s，總時間 1min），然后 4℃，8000g 離心 10min，取上清測定。

②胞漿和葉綠體TPI 酶的分離：按照植物組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5～10 的比例（建議稱取約 0.1g 樣本，加入 1ml 提取液一），冰浴勻漿后于 4℃，200g 離心 5min，棄沉淀，取上清在 4℃，8000g離心 10min，取上清用于測定胞漿 TPI 酶活性，取沉淀加 1ml 提取液二，震蕩溶解后超聲破碎（冰浴，200W，破碎 3s，間歇 7s，總時間 1min），然后 4℃，8000g 離心 10min，取上清測定葉綠體中TPI 酶活性。

建議測定總TPI 酶活性，按照步驟①提取粗酶液，若需要分別測定胞漿和葉綠體中的 TPI，則按照步驟②提取粗酶液。

測定操作:

1. 分光光度計/酶標儀預熱 30min，調節波長至 340nm，蒸餾水調零。

2. 取微量石英比色皿/96 孔板，依次加入 120μl 試劑一，20μl 試劑二，20μl 試劑三，20μl 試劑四，20μl粗酶液，充分混勻，記錄 340nm 處 10s 的吸光值A1 和 310s 的吸光值A2，△A=A2-A1

計算公式:

a. 用微量石英比色皿測定的計算公式如下

（1） 按照樣本蛋白濃度計算

酶活單位定義：每毫克組織蛋白每分鐘生成 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

TPI（nmol/min/mg prot）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷(V 樣×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

（2） 按照樣本質量計算

酶活單位定義：每克組織每分鐘生成 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

TPI（nmol/min/g 鮮重）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷(W ×V 樣÷V 樣總) ÷T=321.54×ΔA÷W

V 反總：反應體系總體積，0.2ml；ε：NADH 摩爾消光系數，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm； V 樣：加入樣本體積，0.02ml；V 樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，5 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g

b. 用 96 孔板測定的計算公式如下

（1） 按照樣本蛋白濃度計算

酶活單位定義：每毫克組織蛋白每分鐘生成 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

TPI（nmol/min/mg prot）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷(V 樣×Cpr) ÷T= 643.08×ΔA÷Cpr

（2） 按照樣本質量計算

酶活單位定義：每克組織每分鐘生成 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

TPI（nmol/min/g 鮮重）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷(W ×V 樣÷V 樣總) ÷T= 643.08×ΔA÷W

V 反總：反應體系總體積，0.2ml；ε：NADH 摩爾消光系數，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光徑，0.5cm； V 樣：加入樣本體積，0.02ml；V 樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，5 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g

磷酸丙糖異構酶試劑盒   光合系列-常備現貨