丙酮酸脫羧酶（pyruvate decarboxylase,PDC）活性測定試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

PDC 主要存在于酵母中，是乙醇發酵的關鍵酶之一，催化丙酮酸脫羧生成乙醛。

測定原理：

PDC 催化丙酮酸脫羧生成乙醛，添加乙醇脫氫酶（ADH）來進一步催化 NADH 還原乙醛生成乙醇和NAD⁺；NADH 在 340 nm 有吸收峰，而 NAD⁺沒有；通過測定 340 nm 光吸收下降速率，來計算 PDC 活性。

丙酮酸脫羧酶活性測定試劑盒 脂肪酸系列

組成：

混合試劑：臨用前配制，將試劑四和試劑五轉移至試劑三中充分溶解待用，用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

自備儀器和用品：

研缽、冰、臺式離心機、紫外分光光度計、1ml 石英比色皿、可調式移液槍和蒸餾水。

粗酶液提取：

1、細菌或細胞處理：收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照每 200 萬細菌或細胞加入 400μl試劑一，超聲波破碎細菌或細胞（功率 200W，工作 3s，間歇 10s，工作 35 次），16000g 4℃離心 20min，取上清，置冰上待測。

2、組織處理：按照組織質量（g）：試劑一體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml試劑一）進行冰浴勻漿，16000g 4℃離心 20min，取上清，置冰上待測。 3、血清（漿）等液體樣品：直接檢測。

PDC 測定操作：

1. 分光光度計預熱 30min，調節波長到 340 nm，蒸餾水調零。

2. 試劑二置于 25℃水浴中預熱 30 min。

3. 空白管：依次在 1ml 石英比色皿中加入 100μl 蒸餾水、100μl 混合試劑、700μl 試劑二和 100μl 試劑六，迅速混勻后于 340nm 比色，記錄 15s 和 75s 的吸光值，分別記為 A1 和A2。

4. 測定管：依次在 1ml 石英比色皿中加入 100μl 上清液、100μl 混合試劑、700μl 試劑二和 100μl 試劑六，迅速混勻后于 340nm 比色，記錄 15s 和 75s 的吸光值，分別記為 A3 和A4。

注意：空白管只需測定一次。

PDC 活性計算公式：

（1） 按照蛋白濃度計算

活性單位定義：25℃中，每毫克蛋白每分鐘催化 1nmol NADH 氧化為 1 個酶活單位。

PDC (nmol/min/mg prot) ={[(A3－A4)－(A1-A2)]÷ε÷d×V 總×10⁹}÷(Cpr×V 樣) ÷T

=1608×[(A3－A4)－(A1-A2)]÷Cpr

（2） 按照樣本質量計算

活性單位定義：25℃中，每克組織每分鐘催化 1nmol NADH 氧化為 1 個酶活單位。

PDC (nmol/min /g 鮮重) ={[(A3－A4)－(A1-A2)]÷ε÷d×V 總×10⁹}÷(W×V 樣÷V 樣總) ÷T

=1608×[(A3－A4)－(A1-A2)]÷W

（3） 按細胞數量計算

活性單位定義：25℃中，每 10⁴ 個細胞每分鐘催化 1nmol NADH 氧化為 1 個酶活單位。

PDC (nmol/min/10⁴cell) ={[(A3－A4)－(A1-A2)]÷ε÷d×V 總×10⁹}÷(細胞數量×V 樣÷V 樣總) ÷T

=1608×[(A3－A4)－(A1-A2)]÷細胞數量

（4） 按血清（漿）體積計算

活性單位定義：25℃中，每毫升血清（漿）每分鐘催化 1nmol NADH 氧化為 1 個酶活單位。PDC (nmol/min

/ml) ={[(A3－A4)－(A1-A2)]÷ε÷d×V 總×10⁹}÷V 樣÷T

=1608×[(A3－A4)－(A1-A2)]

ε：NADH 摩爾消光系數，6.22×10³L/mol/cm；d：比色皿光徑，1cm；V 總：反應體系總體積，1ml=0.001 L， V 樣：加入反應體系中上清液體積，0.1ml；Cpr：蛋白濃度（mg/ml），需要另外測定，建議使用本公司 BCA 蛋白質含量試劑盒；W：樣本質量，g ；V 樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，1 min。

丙酮酸脫羧酶活性測定試劑盒 脂肪酸系列