可溶性酸性轉化酶（Soluble acid invertase, S-AI）試劑盒說明書

微量法 100 管/48 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

蔗糖轉化酶（Invertase，Ivr）催化蔗糖不可逆地分解為果糖和葡萄糖，是高等植物蔗糖代謝關鍵酶之一。根據最適 pH，Ivr 分為酸性轉化酶（AI）和中性轉化酶（NI）兩種類型。

AI 的最適pH 為 3～5。AI 分為可溶性AI(S-AI)和細胞壁不溶性AI（B-AI）兩種類型。S-AI 主要存在于細胞液泡或自由空間中，最適 pH 為 4.5~5.0（酸性），通過降解液泡中蔗糖，調節(jié)液泡中蔗糖的利用和果實內糖類的積累。

測定原理：

S-AI 催化蔗糖降解產生還原糖，進一步與 3,5－二硝基水楊酸反應，生成棕紅色氨基化合物，在 510nm有特征光吸收，在一定范圍內 510nm 光吸收增加速率與S-AI 活性成正比。

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組成：

試劑二：粉劑×1 瓶，4℃保存；臨用前加入 10ml 試劑一充分溶解備用；用不完的試劑 4℃保存;

自備儀器和用品：

可見分光光度計/酶標儀、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

粗酶液提取：

按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。12000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

測定步驟：

1、分光光度計或酶標儀預熱 30min 以上，調節(jié)波長至 510nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定，（在 EP 管中依次加入下列試劑）：

混勻， 37℃準確水浴 30min 后，95℃水浴 10min（蓋緊，以防水分散失），流水冷卻后充分混勻（以保證濃度不變）

混勻，95℃水浴 10min（蓋緊，以防止水分散失），流水冷卻后充分混勻，取 200μl 至微量石英比色皿或 96 孔板中， 510nm 處記錄各管吸光值A，如果吸光值大于 2，可以用蒸餾水稀釋后測定(計算公式中乘以相應稀釋倍數)，ΔA=A 測定-A 對照。每個測定管需設一個對照管。

S-AI 活性計算：

a. 用微量石英比色皿測定的計算公式如下

標準條件下測定的回歸方程為y = 0.0016x -0.001；x 為標準品濃度（μg/ml），y 為吸光值。

（1） 按蛋白濃度計算：

單位的定義：37℃每mg 蛋白每分鐘產生 1μg 還原糖定義為一個酶活性單位。

S-AI 活性（μg/min/mg prot）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(V1×Cpr ) ÷T=20.8×(ΔA +0.001) ÷Cpr

（2） 按鮮重計算：

單位的定義：37℃每g 組織每分鐘產生 1μg 還原糖定義為一個酶活性單位。

S-AI 活性（μg/min/g 鮮重）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(W×V1÷V2) ÷T=20.8×(ΔA +0.001) ÷W

V1：加入反應體系中樣本體積，0.05ml；V2：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，30min； Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本鮮重，g。

b. 用 96 孔板測定的計算公式如下

標準條件下測定的回歸方程為y = 0.0008x -0.001；x 為標準品濃度（μg/ml），y 為吸光值。

（1） 按蛋白濃度計算：

單位的定義：37℃每mg 蛋白每分鐘產生 1μg 還原糖定義為一個酶活性單位。

S-AI 活性（μg/min/mg prot）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0008×V1]÷(V1×Cpr ) ÷T=41.6×(ΔA +0.001) ÷Cpr

（2） 按鮮重計算：

單位的定義：37℃每g 組織每分鐘產生 1μg 還原糖定義為一個酶活性單位。

S-AI 活性（μg/min/g 鮮重）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0008×V1]÷(W ×V1÷V2)÷T=41.6×(ΔA +0.001) ÷W

V1：加入反應體系中樣本體積，0.05ml；V2：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，30min； Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本鮮重，g。

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